Actualizado 23 junio 2023
Hemocultivo
Indicaciones:
- Fiebre de origen desconocido.
- Endocarditis infecciosa.
- Infección del torrente sanguíneo relacionada con el catéter vascular.
- Infecciones del tracto biliar.
- Infecciones en trasplantados y en otros pacientes con inmunosupresión.
- Infección quirúrgica de sitio profundo y/o sepsis.
- Neutropenia febril.
- Osteomielitis aguda.
- Pielonefritis con criterios de ingreso hospitalario.
- Neumonía adquirida en la comunidad con criterios de ingreso hospitalario.
- Neumonía hospitalaria.
Ausencia de indicación:
- Infecciones de la piel sin compromiso sistémico.
- Neumonía comunitaria sin criterios de ingreso hospitalario.
Microorganismos frecuentemente aislados en hemocultivos:
- Estafilococos coagulasa negativos.
- Corynebacterium sp.
- Bacillus sp (excepto B. anthracis).
- Clostridium perfringens.
- Propionibacterium acnes.
Técnica:
- Las muestras por venopunción y catéter deben ser recolectadas simultáneamente y enviadas inmediatamente al laboratorio, con la debida identificación, dentro de las 4 horas.
- Informar en la solicitud de examen para bacteriología si el paciente está usando antibióticos o antifúngicos, si usa sonda vesical y cuál es la sospecha clínica.
- El tiempo de recolección debe especificarse en los viales y en la solicitud de hemocultivo, así como la ruta de recolección (el color de la ruta del catéter o línea arterial).
- No se recomienda cambiar las agujas para inocular viales.
- Al recolectar otras pruebas además del hemocultivo, primero coloque la sangre en el frasco de hemocultivo y no use heparina en la jeringa.
- Desinfecte sus manos.
- Identificar la vena, con preferencia por los sitios con menor colonización cutánea (dorso de las manos y pliegue cubital).
- Desinfección de la tapa del vial de hemocultivo con alcohol antiséptico al 70%.
- Colóquese los guantes de procedimiento.
- Limpiar la piel con una solución detergente de Clorhexidina o PVP-I; en este último, eliminar el exceso de yodo con una gasa seca.
- Realizar antisepsia local con solución alcohólica de Clorhexidina al 2% o PVP-I alcohólica y esperar un minuto. Aplicar el antiséptico con movimientos rectos y unidireccionales.
- Después de la antisepsia, no palpar el área de punción.
Material de absceso
- Recolección indicada siempre que sea posible.
- Limpiar la superficie con SF al 0.9% y realizar antisepsia con alcohol al 70%.
- Para anestesia: Lidocaína al 2%, infiltrada con jeringa de 1 mL.
- Prepare una jeringa de 3 ml (o más) para la aspiración.
- Si es necesario: inyectar 1 mL de SF antes de la aspiración (facilita la recolección).
- Si está indicado el hisopo: Limpie la lesión con SF antes de la recolección.
- Use un frasco estéril para almacenar el material.
Comentarios:
- En el caso de úlceras por presión/pie diabético, realizar desbridamiento para retirar la capa superficial.
- Colocar el material humedecido con gotas de SF al 0.9% en un frasco estéril.
Líquido cefalorraquídeo
- Recolección de cinco viales (estériles) de 1 mL:
- Cultivo para bacterias, hongos y micobacterias.
- Citometría.
- Bioquímica.
- Enviar en hasta 15 minutos al laboratorio.
Secreción ocular
- Hisopo humedecido con SF al 0.9% mediante la técnica de rolado.
- Tome un hisopado en cada ojo.
- Inocular en un frasco con agar chocolate y extender en un portaobjetos para examen directo.
- En caso de endoftalmitis, después de la aspiración del material, inocularlo en agar chocolate.
Líquido ascítico
Equipo necesario:
- Cateter intravenoso 14.
- Jeringas de 10 o 20 ml.
- Campo estéril.
- Guantes estériles.
- Pinzas para cirugía menor.
- Viales de vidrio estériles.
- Colector de vidrio o plástico.
- Equipo de suero.
- Clorhidrato de lidocaína al 2% sin vasoconstrictor.
- Sustancias para asepsia y antisepsia.
Recolecta de 1 a 10 ml para cultivo (la inoculación en frascos de hemocultivo aumenta el rendimiento diagnóstico).
Si sospecha PBE:
- Citología (común y oncótica).
- Citometría.
- Albúmina.
- Bioquímica (glucosa, pH, proteínas totales, LDH, ADA).
Estas medidas/precauciones pueden aplicarse a otro tipo de líquidos (sinovial, pleural, pericárdico y articular). En el caso de la bilis conservar en refrigeración a 4°C.
Heces
- Recoger en un frasco estéril.
- Según lo indicado, solicitar hasta tres muestras, indicando la sospecha clínica.
- Se puede almacenar a 4ºC hasta por 24 horas.
Orina
- Higiene de la región genital con agua y jabón (evitar el uso de alcohol, ya que provoca dolor e irritación local), separando los labios o retrayendo el prepucio.
- Deseche el primer chorro de orina.
- Utilice un frasco estéril y de boca ancha.
- En el caso de un paciente con sonda:
- Desinfectar previamente la conexión con alcohol al 70%.
- Luego aspire con una jeringa de 1 a 10 mL.
- Se puede almacenar hasta 24 horas a 4ºC.
- Importante: No envíe orina de 24 horas para realizar cultivo.
Esputo
- Recoger por la mañana después de la higiene bucal con agua (sin pasta de dientes).
- Indique al paciente que inhale profundamente y provoque tos.
- Si es necesario, considere la inducción mediante nebulización con solución salina al 3%.
- Informar si el paciente esta neutropénico o usa antibióticos.
Secreción de las vías respiratorias inferiores
Para cultivo (cuantitativo): Recoja 1 ml o más en un recipiente estéril.
Para tamizaje: No hay volumen mínimo de secreción.
No se recomienda el almacenamiento.
Punta de catéter vascular
- Limpiar la piel con SF y alcohol al 70%.
- Retire el catéter con técnica aséptica.
- Corte los 5 cm distales del catéter y colóquelos en un vial estéril seco.
[Ver – Rastreo de estafilococos (MRSA)]
Referencias bibliográficas
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